Meiofauna sind kleine benthic wirbellose Tiere, die sowohl in See-als auch in Süßwasser-Umgebungen leben. Der Begriff Meiofauna definiert lose eine Gruppe von Organismen durch ihre Größe, die größer ist als Mikrofauna, aber kleiner ist als Makrofauna, aber nicht eine taxonomische Gruppierung. In der Praxis ist das Organismen, die ein 1-Mm-Ineinandergreifen durchführen können, aber durch ein 45 μm-Ineinandergreifen behalten werden, aber die genauen Dimensionen werden sich vom Forscher dem Forscher ändern. Ob ein Organismus durchgehen wird, wird ein 1-Mm-Ineinandergreifen auch abhängen, ob es lebendig oder zur Zeit des Sortierens tot ist.

Der Begriff meiobenthos wurde zuerst 1942 von der Stute ins Leben gerufen, aber Organismen, die die meiofauna Kategorie einbauen würden, sind seit dem 18. Jahrhundert studiert worden. Ein guter umfassender Text auf meiofauna ist Einführung in die Studie von meiofauna durch Higgins und Thiel (1988).

Das Sammeln des meiobenthos

Meiofauna wird meistens in sedimentären Umgebungen sowohl in See-als auch in Süßwasser-Umgebungen vom Küstenland bis den Tiefsee-gestoßen. Sie können auch auf harten Substraten gefunden werden, die von Algen, der phytal Umgebung und den festgewachsenen wirbellosen Tieren (Entenmuscheln, Miesmuschel-Betten, usw.) leben.

Stichprobenerhebung von Methodiken

Stichprobenerhebung des meiobenthos ist auf die Umgebung klar abhängig, und entweder quantitative oder qualititative Proben sind erforderlich. In der sedimentären Umgebung hängt die Methodik verwendet auch von der physischen Morphologie des Bodensatzes ab. Für qualititative, der innerhalb der Küstenzone, sowohl für rauen als auch für feinen Bodensatz, einen Eimer und Spaten ausfällt, wird arbeiten. Im tiefen und Subküstenwasser ist eine Form des Griffs (wie der Griff von Van Veen) erforderlich, obwohl ein feines Ineinandergreifen (ungefähr 0.25 Mm oder weniger) auch arbeiten würde.

Für die quantitative Stichprobenerhebung von sedimentären Umgebungen an allen Tiefen ein großes Angebot an Probierern sind ausgedacht worden. Das einfachste ist eine Plastikspritze mit dem Ende, das abgeschnitten ist, um einen Kolbenentkerner zu bilden, der in der Küstenzone, oder im Subküstenland mit dem TAUCHGERÄT-Zahnrad aufmarschiert werden kann. Allgemein das tiefere das Wasser das mehr komplizierte der

Stichprobenerhebung des Prozesses wird. Für den meiofauna auf harten Substraten, phytal und epizooic Umgebungen zu probieren, soll die einzige praktische Methodik schneiden oder ein bekanntes Gebiet des Substrats abkratzen und es in einen Plastikbeutel legen.

Förderungsmethodiken

Es gibt ein großes Angebot an Methoden, um meiofauna aus den Proben ihres Habitats abhängig davon herauszuziehen, entweder lebende oder feste Muster sind erforderlich. Um lebenden meiofauna herauszuziehen, muss man mit der Vielzahl der Arten kämpfen, die sich festklammern oder sich dem Substrat, wenn gestört, anschließen. Um zu veranlassen, dass der meiofauna ihren Griff veröffentlicht, gibt es drei verfügbare Methodiken.

Das erste, und am einfachsten, ist osmotischer Stoß, das wird durch das Versenken der Probe in Süßwasser erreicht (klar das wird nur für Seeproben arbeiten) seit ein paar Sekunden. Das wird die Organismen veranlassen zu veröffentlichen, nach dem sie dann frei vom Substrat geschüttelt werden können und durch ein 45 μm-Ineinandergreifen durchgesickert sind und sofort zum frischen gefilterten Meerwasser zurückgekehrt sind. Viele Organismen werden durch diesen Prozess unversehrt durchkommen, so lange der osmotische Stoß zu lange nicht dauert.

Die zweite Methodik ist der Gebrauch eines Narkosemittels. Die bevorzugte Lösung für meiobenthologists ist isotonic Magnesium-Chlorid (7.5g MgCl · 6HO in 100 ml von destilliertem Wasser). Die Probe wird in die isotonic Lösung versenkt und auf die Dauer von 15 Minuten verlassen, nach denen die meiofauna frei vom Substrat geschüttelt und wieder durch ein 45 μm-Ineinandergreifen herausgefiltert und sofort ins frische gefilterte Meerwasser zurückgegeben werden.

Die dritte Methodik ist die Meerwasser-Eistechnik von Uhlig. Das verlässt sich auf die Organismen, die sich vor einer Vorderseite des kalten Eismeerwassers bewegen, das durch die Probe schließlich heruntersteigt, sie aus dem Bodensatz zwingend. Es ist auf Proben von gemäßigten und tropischen Gebieten am wirksamsten.

Für Hauptstudien, wo die große Anzahl von Proben gleichzeitig gesammelt wird, werden Proben normalerweise mit 10-%-Formalin-Lösung und dem meiofauna herausgezogen zu einem späteren Zeitpunkt befestigt. Es gibt zwei Hauptförderungsmethodiken. Das erste, decantation, arbeitet am besten mit rauen Bodensätzen. Proben werden in einem Übermaß an Wasser geschüttelt, dem Bodensatz wird kurz erlaubt sich niederzulassen und der meiofauna, der davon gefiltert ist. Die zweite Methodik, die Flotationstechnik, waren Arbeiten am besten mit feineren Bodensätzen die Masse der Bodensatz-Partikeln ist diesem der meiofauna nah. Die beste Lösung zu verwenden ist die gallertartige Kieselerde, Ludox. Die Probe wird in die Lösung von Ludox gerührt und verlassen, sich seit 40 Minuten niederzulassen, nach denen die meiofauna herausgefiltert werden. Mit wiederholten Förderungen der beider Methodiken sollte (mindestens drei) mit jeder Probe gemacht werden, um sicherzustellen, dass mindestens 95 % der Fauna herausgezogen werden.

Meiofaunal taxa

Gestützt auf dem Schema von Nielsen (2001). Meiofaunal taxa

erscheinen Sie im kühnen Text.

• Protozoa
• Foraminifera
• Ciliophora
• Animalia — Eumetazoa
• Cnidaria
• Triploblastica — Bilateria
• Protostomia — Spiralia
• Schizocelia
• Sipuncula
• Articulata
• Mollusca
• Euarticulata
• Annelida
• Oligochaeta
• Polychaeta
• Panarthropoda
• Onychophora
• Arthropoden
• Tardigrada
• Amphipoda
• Cladocera
• Cumacea
• Harpacticoida
• Isopoda
• Ostracoda
• Mystacocarida
• Syncarida
• Tanaidacea
• Thermosbaenacea
• Halacarida
• Pycnogonida
• Palpigradida
• Insecta
• Bryozoa
• Entoprocta
• Ectoprocta
• Paranchymia
• Platyhelminthes (Turbellaria)
• Nemertea
• Gnathifera
• Rotifera
• Gnathostomulida
• Chaetognatha
• Cycloneuralia
• Gastrotricha
• Introverta
• Nematoda
• Nematophora
• Cephalorhyncha
• Priapulida
• Kinorhyncha
• Loricifera
• Deuterostomia
• Phoronida
• Brachiopoda
• Neorenalia
• Pterobranchia
• Echinodermata
• Cyrtotreta
• Entropneusta
• Chordata
• Urochordata
• Notochordata

Ammoniak von Image:live_Ammonia_tepida.jpg|Live foraminifera tepida (Rotaliida)

Image:Waterbear.jpg|Water tragen Hypsibius dujardini

Image:Gastrotrich.jpg|Gastrotrich

Image:copepodkils.jpg|Copepod

• Giere, Olav (2009). Meiobenthology. Die mikroskopische motile Fauna von Wasserbodensätzen, 2. Ausgabe, Springer. Internationale Standardbuchnummer 978-3-540-68657-6.
• Higgins, R.P. und Thiel, H. (1988) Einführung in die Studie von meiofauna. Smithsonian Einrichtungspresse, Washington D.C. Internationale Standardbuchnummer 0-87474-488-1
• Stute, M.F. (1942) Eine Studie einer benthic Seegemeinschaft mit der speziellen Verweisung auf die Kleinstlebewesen. Zeitschrift der Biologischen Seevereinigung des Vereinigten Königreichs, 25:517-554.
• Nielsen, C. (2001) Tierevolution: Wechselbeziehungen der lebenden Unterabteilungen. Presse der Universität Oxford. Internationale Standardbuchnummer 0-19-850682-1
• Uhlig, G., Thiel, H. und Grau, J.S. (1973) Die quantitative Trennung von meiofauna. Helgoländer wissenschaftliche Meeresuntersuchungen, 11: 178-185.

Außenverbindungen

• Internationale Vereinigung von Miobenthologists